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双缩脲法蛋白质含量测定试剂盒-说明书

更新时间:2025-01-15&苍产蝉辫;&苍产蝉辫;&苍产蝉辫;&苍产蝉辫;&苍产蝉辫;&苍产蝉辫;浏览次数:10

 双缩脲法蛋白质含量测定试剂盒说明书

分光光度法 50T/48S

注意:正式测定之前选择 2-3 个预期差异大的样本做预测定,确保蛋白浓度在 110mg/ml 范围内。

测定意义:

样品可溶性蛋白质含量常常用于酶活性计算。此外,可溶性蛋白质含量也用于食品等质量分析。

测定原理:

强碱性溶液中,双缩脲与CuSO4 形成紫色络合物;紫色络合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比,而与蛋白质分子量及氨基酸成分无关,故可用来测定蛋白质含量。该方法测定范围为 1~10mg 蛋白质,适用于蛋白质浓度高的样品,尤其是动物材料

自备仪器和用品:

可见分光光度计、台式离心机、可调式移液器、1 ml 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

组成:

 

产物名称

DE6001-50T/48S

Storage

试剂一:液体

50ml

4℃

标准品:液体

1ml

4℃

说明书

一份

 

标准品:液体 1尘濒×1 瓶,5 mg/ml4℃保存。

样品中可溶性蛋白质提取:

1.        液体样品:澄清无色液体样品可以直接测定。

2.        组织样品:按照组织质量(g):提取液体积(ml)15~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1ml 提取液(自备,根据需要选用酶提取缓冲液或者蒸馏水或者生理盐水)冰浴匀浆,8000g4℃离心 10min,取上清,即待测液。(动物样品常常需要稀释)

3.        细菌、真菌:按照细胞数量(104 个):提取液体积(ml500~10001 的比例(建议 500 万细胞加入1ml 提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 秒,间隔 7 秒,总时间 3min);然后 8000g4℃离心 10min,取上清置于冰上待测。

测定步骤:

1.     分光光度计预热 30 min,调节波长到 540 nm,蒸馏水调零。

2.     空白管:取 1 mL 玻璃比色皿,加入 200μ濒 蒸馏水,1000μ濒 试剂一,混匀后室温静置 15 min,于 540nm 比色,记为 A 空白管。

3.     标准管:取 1 mL 玻璃比色皿,加入 200μ濒 标准液,1000μ濒 试剂一,混匀后室温静置 15 min,于 540 nm 比色,记为 A 标准管。

4.     测定管:取 1 mL 玻璃比色皿,加入 200μ濒 待测液,1000μ濒 试剂一,混匀后室温静置 15 min,于 540nm 比色,记为 A 测定管。

注意:空白管和标准管只需测定一次。

样品中蛋白质浓度计算公式

C 待测(mg/mL= C 标准管×(础 测定管-A 空白管)÷(础 标准管-A 空白管)

=5×(础 测定管-A 空白管)÷(础 标准管-A 空白管)

 

注意事项:

1.  样品蛋白浓度须在 1~10mg/ml 范围内,低于 1mg/ml 不能用此法,高于 10mg/ml 须做相应稀释。因此测定前用 1~2 个样做预实验,确保蛋白浓度在 1~10mg/ml 范围内。

2.  待测样品蛋白提取可用生理盐水、双蒸水或不含蛋白的 PBS 提取。该法受硫酸铵、Tris 缓冲液干扰,提取液中应不含这些物质;否则改用BCA 蛋白质含量测定试剂盒。


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